ВЛИЯНИЕ ВОДОРАСТВОРИМЫХ ПОЛИМЕРОВ НА ВЫЖИВАЕМОСТЬ КЛУБЕНЬКОВЫХ БАКТЕРИЙ ЛЮПИНА (RHIZOBIUM LUPINI)

Работа посвящена оценке выживаемости клубеньковых бактерий люпина (Rhizobium lupini) на семенах, а также изучению возможности увеличения допустимых сроков между инокуляцией семян и их высевом. Оценено влияние водорастворимых полимеров – альгината натрия, карбоксиметилцеллюлозы, поливинилового спирта (4-88, 4-98) и поливинилпирролидона на выживаемость клубеньковых бактерий. Определено число выживших клубеньковых бактерий люпина R. lupini (шт. 363а и шт. 367а) на инокулированных семенах люпина сорта Олигарх спустя сутки после инокуляции контрольным рабочим раствором (20% бактериальной суспензии в воде), а также растворами, модифицированными 5% следующих водорастворимых полимеров: альгинат натрия, карбоксиметилцеллюлоза (КМЦ), поливиниловый спирт двух марок (PVA 4-88 и PVA 4-98) и поливинилпирролидон (PVP). По результатам опыта PVP определен как наиболее эффективный полимерный протектор ризобий среди вышеназванных, так как число выживших бактерий в варианте с PVP было на порядок больше контрольного варианта и в 2–3 раза больше вариантов с другими полимерами. Изучена динамика гибели бактерий с момента инокуляции и на протяжении последующих 2, 4, 8, 24, 48 и 168 часов в различных вариантах опыта. Определена эффективность PVP в качестве протектора ризобий на инокулированных семенах, выявлена его оптимальная концентрация.

1. Агеева П.А., Почутина Н.А. Результаты селекции сидерального узколистного люпина во Всероссийском научно-исследовательском институте люпина // Зернобобовые и крупяные культуры. 2013. № 2(6). С. 132–135.

2. Дебелый Г.А., Конорев П.М., Меднов А.В. Результаты и перспективы использования детерминантных сортов люпина узколистного // Агрохимический вестник. 2011. № 5. С 25–26.

3. Доспехов Б. А. Методика полевого опыта. М.: Книга по Требованию, 2012. 351 с.

4. Кокорина А.Л., Кожемяков А.П. Бобово-ризобиальный симбиоз и применение микробиологических препаратов комплексного действия – важный резерв повышения продуктивности пашни. СПб.: Изд-во СПбГАУ, 2010. 50 с.

5. Кучин Н.Н., Мансуров А.П. Оценка консервирующих свойств исходного сырья для силосования // Вестник НГИЭИ. 2013. № 12(31). С. 50–55.

6. Лактионов Ю.В., Белоброва С.Н., Кожемяков А.П., Воробьев Н.И. и др. Эффективность бобово-ризобиального симбиоза “Нут Cicer arientium L. – бактерии Mezorizobium cicer” при использовании минеральных удобрений // Плодородие. № 5. 2013. С. 24–25.

7. Трухачев В.И., Кудашев Р.И., Половец Е.А. Продуктивность молодняка крупного рогатого скота при скармливании силоса из сорго сахарного в смеси с высокобелковыми кормовыми культурами // Достижения науки и техники АПК. 2010. № 11. С. 68–69.

8. Чекмарев П.А. Итоги реализации программы биологизации земледелия в Белгородской области // Земледелие. 2014. № 8. С. 3–6.

9. Keyser H.H., Fudi L. Potential for increasing biological nitrogen fixation in soybean // Plant and Soil. 1992. V. 141. P. 15–17.

10. Marra L.M., Fonseca Sousa Soares C.R., Oliveira S.M., Avelar Ferreira P.A., Soares B.L. Biological nitrogen fixation and phosphate solubilization by bacteria isolated from tropical soils // Plant Soil. 2012. V. 357. P. 289–307 (doi: 10.1007/s11104-012-1157-z).

11. Trukmann K. Uheaastase lupiini kasvatamises mojust tihedaks tallatud mullale / K. Trukmann, E. Reintam, J.Kuht // Conference on the Faculty of Agronomy of EAU. 2005. V. 220. P. 27–29.